YeaRed是一种独特的油性大分子，不能穿透细胞膜进入细胞内。不易挥发升华，人体不会吸入。艾姆斯氏测试结果也表明YeaRed在凝胶染色浓度下完全无诱变性，是一种安全无毒的核酸染料。YeaRed与EB具有相同的光谱特性，无需改变滤光片及观察装置（普通紫外凝胶透射仪），在300 nm处紫外光激发检测即可。YeaRed适用于琼脂糖和聚丙烯酰胺凝胶电泳中的dsDNA，ssDNA以及RNA染色，可以选择胶染法或泡染法进行染色，使用非常方便、灵活。

• 安全无毒：艾姆斯氏试验结果表明，YeaRed在凝胶染色浓度下无致癌毒性
• 灵敏度高：与EB灵敏度相当，能进行高效的电泳染色
• 稳定性强：常温保质期5年
• 适用性广：琼脂糖凝胶或聚丙烯酰胺凝胶电泳前后的染色均适用
• 通用型强：与EB有相同的光谱特性，无需改变滤光性能展示
• 容易处理：废弃的YeaRed在环境下会自然分解，无需特殊处理

• 核酸染料YeaRed与EB进行琼脂糖凝胶电泳的效果对比

图.样品为100 bp DNA ladder和2000 DNA Marker，上样量分别为2、3、4、5μL;电泳条件：140V,40min。

避光室温保存，有效期5年。

Q: YeaRed在DMSO溶液和水溶液是否存在差异？

A：10202ES水溶是一个全新的改良。由于DMSO会被皮肤吸收，故建议染料溶于水，以避免处理DMSO存在的潜在危害。在琼脂糖凝胶电泳的实验中，两种溶剂效果相当。其他方面的应用，客户可根据需求选择。

Q：泡染法用后的YeaRed核酸染料能否重复使用？

A: 可重复使用3次左右。

Q: YeaRed核酸染料适用的样本类型有哪些？

A:适用于dsDNA、ssDNA和RNA 各种大小片段的电泳染色？

Q: YeaRed(10202)和YeaGreen(10204)这两款染料的区别是什么？
A: YeaRed的激发波长在300 nm，需要在紫外成像仪下观测；YeaGreen的激发波长在471 nm，需要在激光成像仪或可见光成像仪下观测。
Q: YeaRed的结合机制是什么？
A: 通过静电及电荷相互作用的结合。

Q: 为什么有时候染色后条带会出现拖尾或扭曲的现象？
A: YeaRed是油性大分子，YeaRed通过静电作用与核酸紧密结合，当核酸上样量较高时可能会影响核酸分子的迁移率导致拖尾或条带变形，出现这种情况建议减少核酸样本上样量并稀释marker。
Q: YeaRed核酸染料适合哪些下游实验？

A: 兼容胶回收，以及克隆和测序等下游实验。

Q: 可以放-20℃吗？不小心放-20℃了怎么处理呢？

A; 不能放-20℃，可能会冻坏染料产生沉淀。如果短期内不小心放-20℃，可以尝试融化后，放在35度左右加热，超声1-2min后使用，后续不可再反复冻融。

Q:这款染料的发射波长是多少？

A：发射波长590nm

Q：核酸染料有点不容易混匀，有什么操作小技巧吗？

A：胶溶液煮沸后，重新找一个空的干净的锥形瓶，左手拿胶溶液的瓶子，右手使用移液器吸取核酸染料，在将左手胶溶液倒进新的空锥形瓶的时候，打入核酸染料，使用胶溶液冲散核酸染料。