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Hieff UNICON® Universal Blue qPCR SYBR Green Master Mix
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产品介绍

Hieff UNICON® Universal Blue qPCR SYBR Green Master Mix是2×实时定量PCR扩增的预溶液,具有高灵敏度和高特异性的特点,颜色为蓝色,具有加样示踪的作用。核心组分Hieff UNICON® Taq DNA聚合酶采用抗体法热启动,可以有效抑制样品准备过程中引物退火导致的非特异性扩增。同时配方添加了提升PCR反应扩增效率因子和均衡不同GC含量(30~70%)基因扩增的促进因子,使定量PCR可以在宽广的定量区域内获得良好的线性关系。

本产品中含有特殊的ROX Passive Reference Dye,适用于所有qPCR仪器,无需在不同的仪器上调整ROX的浓度,只需在配制反应体系时加入引物和模板即可进行扩增。

产品特色
  • 全仪器平台通用:预混特定类型参比染料,无需调整ROX浓度
  • 易于示踪:蓝色预混液,观察颜色可直接区分是否加样
  • 强稳定性:室温配制体系,配制后的体系可4℃放置24 h,检测结果无变化
  • 上机快速:兼容常规程序与快速程序,最快46 min完成定量实验
  • 扩增性能好:扩增效率高,特异性好,可检测个位拷贝数基因
应用案例
  • 全平台通用:适用于所有qPCR机型

图1. Hieff UNICON® Universal Blue 预混液可实现全平台通用。针对不同仪器平台,与T品牌对比,Hieff UNICON® Universal Blue 预混液Ct值起峰更加靠前。以2 µL的质粒10倍梯度稀释液为模板,扩增IL23R基因。

  • 灵敏度高:可检测至单拷贝

图2. Hieff UNICON® Universal Blue 预混液可有效检测7个数量级范围的模板量,扩增效率高,可在宽广的线性范围内获得良好的线性关系。以2 µL的106-100拷贝的质粒为模板,扩增人IL23R基因。

  • 检出率和特异性良好:广泛适用于30-70%GC含量的扩增子

图3. Hieff UNICON® Universal Blue预混液广泛适用于30-70%GC含量的扩增子,保证了极高的特异性检出率。以2 µL的293T cDNA为模板,利用Primer5软件设计1000对长度为200 bp扩增子(GC%含量30%-70%)的引物,随机扩增其中的27个扩增子。

  • 分辨率高:可精准分辨2倍模板浓度差异

图4. Hieff UNICON® Universal Blue 预混液可精准区分2倍模板浓度差异。以2 µL的293T cDNA原液的2倍梯度稀释液为模板,扩增GAPDH基因。

  • 复孔重复性好:90个复孔

图5. Hieff UNICON® Universal Blue预混液具备良好的重复性,90个复孔的扩增曲线高度重合,Ct值标准偏差<0.2。以1 µL的293T cDNA为模板,扩增GAPDH基因。

存储条件

冰袋运输。-20℃避光储存,有效期18个月。

本品避免反复冻融。产品中含有荧光染料SYBR Green I,保存或配制反应体系时需避免强光照射。

FAQ

Q:建议qPCR 实验用几步法?

A:常用 2 步法。需提高扩增特异性,可选用 2 步法或提高退火温度。在扩增效率低, ct 值过大的时候,可以改用 3 步法或延长延伸时间。

Q:qPCR 实验结果的有效性?为什么建议Ct 值要大于 15?

A:有效性要满足三个条件:(1)标准曲线:扩增效率范围:90-110%,对应斜率为  -3--3.5。 R2>0.98。 (扩增效率=10-1/斜率-1),当斜率=-3.32 时,扩增效率=100%。(2)扩 增曲线:S 型曲线,且 Ct 值在 15-35 之间,阴性对照 Ct>35 或无 Ct 值。(3)熔解曲线:为单一峰。

Ct 值大于 15 个循环是因为 3-15 个循环的荧光值标准差的 10 倍是荧光阈值,Ct 值太小了会影响曲线。

Q:11184 的灵敏度极限是?

A:单拷贝

Q:同一基因复孔间熔解曲线 Tm 值有差异?

A:同样的扩增产物也会出现Tm 值有微小差异,一般差异在 1 度以内都可以接受。

Q:为什么稀释了模板CT 值反而变小了?

A:一般 CT 值与模板起始浓度呈负相关,浓度越高,CT 值越小。但也有很多特殊情况, 比如体系中存在抑制物或是模板不纯,这时候稀释模板反而能使 CT 值变低。

Q:内参CT 值小于 20,目的基因均大于 30,怎么办?

A:可能是目的基因为低丰度表达基因导致。建议:a)换用内参;b)换引物。

Q:为什么扩增曲线杂乱且不连续?

A:可能原因是 ROX 添加不当。确认参比染料ROX 是否添加正确。

Q:模板用量X 是多少?常用的量是多少?

A:(1)X 表示模板 DNA 量需要实验者在首次实验时进行摸索。首先对模板DNA 进行稀释(一般推荐 5-10 倍),然后模板量梯度上样,选择 CT 值落在  20-30  之间的最佳上样量。
(2)常用的量是逆转录 500-1000ng 总RNA,稀释 10 倍取 1μL cDNA 进行qPCR 实验。

Q:qPCR 实验结果的有效性?为什么建议Ct 值要大于 15

A:a)有效性要满足三个条件:
(1)标准曲线:扩增效率范围:90-110%,对应斜率为 -3--3.5。R2>0.98。 (扩增效率=10-1/斜率-1),当斜率=-3.32 时,扩增效率=100%。
(2)扩增曲线:S 型曲线,且 Ct 值在 15-35 之间,阴性对照 Ct>35 或无Ct 值。
​(3) 熔解曲线:为单一峰。

b)3-15 个循环的荧光值标准差的 10 倍是荧光阈值,Ct 值太小了会影响曲线。

Q:Rox 的作用?

A:ROX 是一种参比染料,其作用是标准化荧光定量反应中的非PCR 震荡,校正加样误差或者是孔与孔之间的误差,提供一个稳定的基线。

Q: 为什么扩增产物跑胶会有拖尾的现象?

A: 试剂中本身含有稳定性成分,本身不参与任何反应,稳定剂成分在电泳胶上面会表现出弥散状,不建议跑完后再电泳

Q: 试剂比较粘稠,容易产生气泡,如何避免?

A: 可以先混合大体系,再分别加到离心管里面,最后加模板;

枪头加样不要把空气打进去,二档吸样,一档打样品;缓慢推出液体,不要吹打;沿着壁打入到孔内;另外配置完后,如果还有气泡,离心PCR管去除。如果是96孔板,移液完后轻轻敲96孔板。

Q:为什么从冰箱中拿出有淡黄色沉淀,还可以使用吗?

A:沉淀是稳定剂冻存后溶解度下降析出形成的,不影响产品性能。建议解冻后上下颠倒,枪头吹打混匀至沉淀消失。若仍未溶解,可离心后取液体,请避免取到该沉淀。

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